Правила по охране труда и ТБ направлены на предупреждение опасных и вредных производственных факторов, связанных с особенностями работы в лаборатории, основные из них следующие:

1. Химические факторы – возникают при работе с реактивами.

2. Физические факторы – возникают при работе с приборами и аппаратами.

3. Биологические факторы – возникают при работе с инфицированным биологическим материалом.

В лаборатории нужно соблюдать следующие общие требования:

1. Работать только в спецодежде – халате, колпачке и сменной обуви.

2. Приступать к работе только после вводного инструктажа и первичного инструктажа на рабочем месте. Повторный инструктаж проводится не реже 1 раза в 6 месяцев.

3. Перед работой внимательно ознакомиться с методикой проведения анализа и в соответствии с этим подготовить свое рабочее место.

4. Перед работой следует убедиться в том, что:

· правильно уяснена методика,

· правильно подготовлены приборы и оборудование,

· взятые вещества соответствуют методике анализа,

· все расставлено так, чтобы было удобно достать, не вставая с места, и самое необходимое находится в пределах оптимальной рабочей зоны, соответствующей размаху согнутой в локтевом суставе руки.

5. Работать только на закрепленном месте.

6. Рабочее место содержать в чистоте, не загромождать его не нужными предметами.

7. Во время работы соблюдать тишину, порядок и чистоту.

8. Не допускать торопливости, невнимательности, беспорядочности и неряшливости.

9. Не покидать рабочее место во время проведения анализа, не оставлять без присмотра включенные приборы.

11. Соблюдать правила ТБ при работе с кислотами, щелочами, летучими и ядовитыми веществами, инфицированным материалом, нагревательными приборами.

12. Соблюдать правила противопожарной безопасности.

13. Не наклоняться близко над склянками с реактивами (правильно нюхайте!).

14. Работать с реактивами только над столом.

15. Пипетировать вещества только пипеткой с грушей или дозатором.

17. Не пробовать на вкус в лаборатории любые вещества, даже если они кажется вам знакомыми.

18. В лаборатории запрещается принимать пищу!

19. После работы обязательно вымыть руки с мылом!

20. После работы убрать все приборы и реактивы по местам, выключить все электроприборы, закрыть форточки, краны водоснабжения и протереть рабочий стол.

21. Уметь оказывать первую медицинскую помощь.

Профилактика профессиональных заражений, связанных с работой с инфицированным материалом, является одной из важнейших задач в работе лаборанта. Меры профилактики сводятся к максимальному предотвращению контактов кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо придерживаться следующих правил:

1. Работать в спецодежде: халате, шапочке, сменной обуви, резиновых перчатках. При угрозе разбрызгивания крови работать в очках, маске, клеенчатом фартуке.

2. Повреждения на коже (порезы, царапины) перед работой нужно обязательно заклеить лейкопластырем.

3. Запрещается пипетирование биологического материала ртом. Обязательно нужно использовать автоматические пипетки или резиновые груши.

5. В случае загрязнения рук кровью их следует немедленно обработать тампоном, смоченным 1 % раствором хлорамина или 70 % раствором спирта в течение 2 минут, а затем вымыть проточной водой с мылом и протереть индивидуальным полотенцем.

6. При загрязнении кровью перчаток, их протирают тампоном, смоченным в 3 % растворе хлорамина или 6 % перекисью водорода.

7. При загрязнении стола кровью, его немедленно протирают дезраствором дважды с интервалом 15 минут.

8. После работы перчатки дезинфицируют в течении 60 минут в одном из дезинфицирующих растворов.

9. После работы поверхность рабочего стола обязательно продезинфицировать – промыть ветошью смоченной в одном из дезрастворов.

10. Лабораторный инструментарий, иглы, капилляры, предметные стекла, кюветы ФЭКа, пипетки, резиновые груши и т.д. после работы должны подвергаться дезинфекции и стерилизации.

11. Для дезинфекции можно применять следующие растворы:

· Хлорамин 3 %.

· Перекись водорода 6 %.

· Моющий раствор (0,5 % раствор СМС и 6 % перекись водорода).

· Осветленный раствор хлорной извести 0,6 %.

· Сульфохлорантин 0,5 %.

· Дезоксон-1 0,5% и т.д.

· В настоящее время в лаборатории могут применяться другие, более современные дезинфицирующие средства.

Практическая работа

«Правила работы с лабораторным оборудованием».

Цели практической работы:

· изучить особенности техники безопасности при работе в биохимической лаборатории;

· закрепить умения работать химической пипеткой, мерным цилиндром и др. лабораторной посудой;

· закрепить умения готовить растворы приблизительной концентрации.

Задания для самостоятельной работы:

1. Законспектируйте в тетрадь правила техники безопасности при работе в биохимической лаборатории и правила работы с биологическим материалом в КДЛ.

2. Оборудуйте рабочее место для практической работы согласно методике работы.

3. Выполните практическую работу.

4. Оформите результаты работы в тетради по плану:

· Название работы.

· Задание к работе.

· Рисунок.

· Наблюдения, расчеты, уравнения реакций и т.д.

5. Сделайте вывод по работе.

6. Ответьте на предложенные вопросы.

Задание № 1. Работа с пипетками.

· Подготовьте пипетки с резиновой грушей на 1 мл или на 2 мл.

· Вспомните, как определяется цена деления мерной посуды.

· Подготовьте 5 пробирок и баночку с водой.

· Налейте в каждую пробирку по 4 мл воды, используя груши на 1 или 2 мл. Работайте медленно. Помните, в работе лаборанта очень важна аккуратность и точность!

· Слейте всю воду из пробирок в мерный цилиндр, и измерь количество воды.

· Если воды в цилиндре меньше или больше, чем 20 мл, то повторите всю операцию с самого начала.

· Если воды в цилиндре ровно 20 мл, то приступайте к выполнению следующего задания.

Задание № 2. Приготовление растворов.

· Произведите расчеты, необходимые для приготовления следующих растворов:

1. 20 мл 5 % раствора сульфата меди.

2. 25 мл 10 % раствора гидроксида натрия.

3. 25 мл 5 % раствора серной кислоты.

· Приготовьте один из предложенных растворов.

· Напишите алгоритм приготовления растворов приблизительной концентрации.

Ответьте на вопросы:

1. Какой биологический материал можно использовать для биохимических исследований?

2. Чем отличается цельная кровь, сыворотка и плазма крови?

3. Как определить цену деления мерной полсуды (на примере цилиндра или пипетки).

4. Как правильно работать со спиртовкой и другими нагревательными приборами.

5. Фильтрование: приборы, правила проведения, промывание осадков.

В целях предупреждения инфицирования мед. персонала необходимо рассматривать всех пациентов как потенциально инфицированных парентеральным гепатитам и ВИЧ – инфекцией или другими переносимыми с кровью и биологической жидкостью вирусными заболеваниями, и следует строжайшим образом соблюдать меры предосторожности.

1. Избегать случайных травм инструментами, инфицированными потенциально зараженным материалом и контакта открытых поражений кожи с биологическими материалами: кровью, спермой, вагинальными выделениями, спинно – мозговой жидкостью, синовиальной, плевральной, брюшной, перикардиальной, околоплодной жидкостью. Концентрация вируса низка или не обнаруживается в выделениях носовой полости, слюне слезах, рвотных массах, моче.

· Не сгибайте, не ломайте иглы после их использования и не надевайте на них колпачки до обработки.

· Колющие и режущие предметы не передавать из рук в руки, а класть в нейтральную зону.

· Обработку острых предметов и игл проводить отдельно от других инструментов.

· Обработку острых, режущих инструментов и игл проводить в перчатках.

· Одноразовые режущие- и колющие предметы после дезинфекции складывать в непрокалываемые контейнеры, сделанные из плотного картона, пластмассы или металла, которые впоследствии утилизуются или идут в переработку.

2. При работе с образцами крови, жидкостями, экскрементами и секретами организма пациентов, а также с материалами и объектами, подвергающиеся загрязнению ими, пользоваться перчатками и желательно менять их после каждого пациента, использовать только целые перчатки из латекса достаточной толщины.

3. Не забывайте тщательно мыть руки и кожу сразу после контакта с жидкостями организма, а также перед и после выполнения манипуляции. Руки должны быть тщательно вымыты, даже если до этого были одеты перчатки. Забор крови проводить одноразовыми шприцами,

4. Пользуйтесь спец. одеждой – халатом, колпаком, маской, очками, водонепроницаемым фартуком и др.

5. Кровь и другие биологические жидкости должны иметь специальную маркировку, при транспортировке все образцы должны быть помещены во второй контейнер или герметичную сумку (спец. контейнер).

6. Необходимо соблюдать максимальную осторожность при заборе крови, при работе с пробирками, заполненными кровью. Не допускать разбрызгивания крови. При разбрызгивании крови следует быстро очистить загрязненную поверхность дезинфицирующим раствором (ОСТ 42-21- 2-85).

7. Шприцы, иглы, колющий и режущий инструментарий многоразового использования обрабатывается по ОСТу 42-21-2-85 и приказу № 408.

8. Важно ограничить инъекции и другие чрезкожные процедуры, сокращение числа ненужных инъекций является важным мероприятием для защиты как медицинских работников, так и пациентов.

9. Использованные тампоны с кровью, иглы, шприцы и другой инструментарий погружать в 3 % раствор хлорамина на 1 час или 6 % перекись водорода на 6 часов, одноразовый инструментарий в 5% раствор хлорамина.

10 . Неукоснительно соблюдать режим дезинфекции, предстерилизационной очистки, стерилизации!

11 . Соблюдать бельевой режим – белье менять по мере загрязнения, регулярно, но не менее 1 раза в 7 дней, Загрязненное белье пациента подлежит немедленной замене.

Оформление направлений на различные виды лабораторных исследований

Цель: Правильно оформить направление.

Показания: Назначение врача.

Оснащение: Бланки, этикетки.

Последовательность действий:

В бланке направления в лабораторию поликлиники укажите:

· Название лаборатории (клиническая, биохимическая, бактериологическая и т.д.).

· Фамилию, имя, отчество пациента.

· Возраст.

· Номер истории болезни.

· Название отделения, номер палаты, (при амбулаторном обследовании - домашний адрес).

· Материал.

· Цель исследования.

· Дату; подпись медицинской сестры, оформляющей направление.

Взятие мокроты на микобактерии туберкулеза

Цель. Выделение микобактерии туберкулеза

Показания . Подозрение на туберкулез легких.

Оснащение . Стерильная сухая банка с плотно закрывающейся крышкой.

Техника взятия мокроты на микобактерии туберкулеза:

1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании следующим образом: «Завтра с 6.00 утра вам нужно начать собирать мокроту на исследование. Мокрота на назначенное вам исследование собирается в течение суток. Это значит, что всю мокроту, которая будет у вас выделяться при кашле, необходимо сплевывать в эту банку. Банку, пожалуйста, ставьте в прохладное место и плотно закрывайте крышкой». Необходимо показать пациенту то место, где в течение суток будет храниться банка с мокротой.
2. Собранную мокроту отправляют в бактериологическую лабораторию.
3. Результат исследования вклеивают в медицинскую карту стационарного больного.

Примечания . Если у пациента выделяется мало мокроты и ее будет недостаточно для исследования, то мокроту можно собирать в течение 3 сут, сохраняя в прохладном месте.

Билет№28

1.Ситуационная задача:

У пациента 38 лет в области левого плеча появился постинъекционный инфильтрат. Дежурная медсестра поставила согревающий компресс.

Объективно: гиперемия в области левого плеча, боль, t тела 37 о С.

1. Продемонстрируйте технику постановки согревающего компресса, оказывая медицинскую услугу в пределах своих полномочий.

2. Назовите правила техники безопасности при работе с дезинфицирующими средствами, обеспечивая безопасную больничную среду для персонала.

2.Технология выполнения сестринских услуг: Продемонстрируйте на фантоме технику постановки масляной клизмы.

При работе с патологическим материалом, содержащим микробы, и особенно при культивировании патогенных мик­робов во избежание заражения персонала лаборатории необхо­димо соблюдать правила техники биологической безопасности. В зависимости от степени патогенности и контагиозности воз­будителей принято выделять четыре уровня биологической опасности и соответствующих мероприятий, необходимых для предупреждения заражения в лаборатории.

Первый уровень (работа с непатогенными микроорганиз­мами). Необходимо соблюдение стандартных правил (см. тему 1.1).

Второй уровень (работа с низковирулентными микроорга­низмами). К числу дополнительных правил и мероприятий относятся использование лабораторной одежды и защитных перчаток; обязательное обеззараживание всех загрязненных от­ходов; ограничение доступа в лабораторию. Для предотвраще­ния попадания микробов в воздух рабочего помещения выпол­нение механических манипуляций, сопряженных с высокой вероятностью распыления микроорганизмов, необходимо осу­ществлять в специализированных закрытых легкодезинфици-руемых настольных боксах.

Третий уровень (работа с высоковирулентными микроорга­низмами). К числу дополнительных правил и мероприятий относятся использование специальной защитной лабораторной одежды; контроль доступа в лабораторию. Все манипуляции с патологическим материалом необходимо осуществлять в спе­циализированных боксах.

Четвертый уровень (работа с возбудителями ООИ). Работа с возбудителями особо опасных инфекций (ООИ) разрешена ис­ключительно в специализированных режимных лабораториях,

Имеющих оборудование, необходимое для эффективной защи­ты от патогенных микробов, их контроля и уничтожения. К числу дополнительных правил и мероприятий относятся наличие отдельных помещений для смены лабораторной одеж­ды и душевых, обязательное обеззараживание всех отходов лаборатории. Все манипуляции с патологическим материа­лом необходимо осуществлять в специализированных на­стольных боксах, снабженных системами стерилизации возду­ха (см. тему 7.1).

■ ОЦЕНКА РЕЗУЛЬТАТОВ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Обнаружение патогенных микроорганизмов, являющихся возбудителями заболеваний (например, микобактерии туберку­леза, гонококки и др.), имеет решающее значение для поста­новки диагноза.

Выявление роли условно-патогенных микроорганизмов в этиологии и патогенезе заболеваний должно быть основано на строгой аргументации. Обязательным условием является кли­ническое, эпидемиологическое, микробиологическое и сероло­гическое исключение возбудителей инфекционных болезней (например, возбудителей кишечных инфекций, венерических болезней и др.). Для оценки роли условно-патогенных микро­организмов в патологии могут быть использованы следующие критерии.

1. Выделение микроорганизмов из крови, спинномозговой жидкости или других жидкостей организма, которые в норме у здоровых людей являются стерильными.

2. Обнаружение в исследуемом материале, особенно при дисбактериозах, условно-патогенных микроорганизмов в до­статочно больших количествах (например, 10 5 -10 7 микробных клеток в 1 мл). Для этого проводят количественное определе­ние микроорганизмов по числу КОЕ в 1 г или 1 мл испытуе­мого образца. Эти количественные показатели могут варьиро­вать в зависимости от вида микроорганизмов, типа исследуе­мого материала, характера и стадии заболевания.

3. Повторное, многократное (в течение суток или через сутки) выделение одного и того же микроорганизма из одного и того же материала от больного (например, из крови при сепсисе и т.д.).

4. Обнаружение идентичных условно-патогенных микроор­ганизмов в разных образцах материала (например, при пище­вых токсикоинфекциях - в промывных водах желудка, рвот­ных массах, испражнениях, пищевых продуктах).

5. Нарастание титра антител в 4 раза и более в парных сыворотках крови больного в отношении условно-патогенного микроорганизма, который предполагается как возбудитель дан-

ного патологического процесса. В ряде случаев рекомендуется использовать в качестве антигенов аутоштаммы микроорганиз­мов, выделенные от больных.

6. Положительные кожно-аллергические реакции у больных с аллергенами, приготовленными из условно-патогенных мик­роорганизмов.

7. В случае внутрибольничных (нозокомиальных) инфек­ций - выделение идентичных культур микроорганизмов от группы больных.

8. Совпадение данных лабораторного определения чувстви­тельности микроорганизмов к антибиотикам с эффективнос­тью антимикробной терапии в клинических условиях, под­тверждаемое улучшением состояния больного и уменьшением количества или элиминацией соответствующих микроорганиз­мов.

9. Условно-патогенные микроорганизмы (синоним: оппор­тунистические) представляют собой большую группу микроор­ганизмов, занимающих различное систематическое положение. Они встречаются среди аэробных и анаэробных бактерий, гри­бов, простейших. В клинической микробиологии наиболее час­то встречаются условно-патогенные микроорганизмы, относя­щиеся к родам Staphylococcus, Streptococcus, Escherichia, Klebsiel­la, Proteus, Entewbacter, Citrobacter, Serratia, Pseudomonas, Haemo­philus, Bacteroides, Veillonella, Vibrio, Peptococcus, Peptostreptococ-cus, Mycobacterium, Mycoplasma, Candida и др.

■ ОФОРМЛЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛАБОРАТОРНЫХ МИКРО­БИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Результаты лабораторных исследований оформляют на спе­циальных бланках, которые передают лечащему врачу.

1. В ответе прежде всего указывают наличие патогенных, а также условно-патогенных микроорганизмов, обнаруженных при микробиологическом исследовании. Сообщают также дан­ные лабораторного определения чувствительности микроорга­низмов к антибиотикам.

2. При обнаружении микробных ассоциаций перечисляют все микроорганизмы, указывают доминирующие виды и коли­чественные микробиологические показатели.

3. В соответствии с правилами международной номенкла­туры в ответах приводят видовые названия микроорганиз­мов, например: Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa и т.д.

4. С целью ускорения лабораторных исследований в ряде случаев при выделении условно-патогенных микроорганизмов вполне допустимо в ответе ограничиться указанием только родовой принадлежности обнаруженных микроорганизмов, на­пример Proteus sp., Candida sp. и т.д.

Аэробные бактерии Грамположительные бактерии

Chryseobacterium indologenes Chryseobacterium meningosepticum Enterococcus faecalis и другие виды Enterococcus Erysipelothrix rhusiopathiae Staphylococcus aureus Staphylococcus epidermidis Staphylococcus saprophiticus и другие виды Staphylococcus Streptococcus pyogenes Streptococcus agalactiae

Грамотрицательные бактерии

Burkholderia cepacia Citrobacter koseri Edwardsiella tarda Eikenella corrodens Enterobacter spp. Escherichia coli Haemophilus influenzae Klebsiella spp. Listeria monocytogenes Moraxella catarrhalis Proteus vulgaris Proteus mirabilis Pseudomonas aeruginosa Pseudomonas putida Pseudomonas fluorescens Salmonella enterica

подвид enterica биовар typhimurium Serratia spp. Spirillum minus Streptobacillus moniliformis Vibrio vulnificus

Анаэробные бактерии

Неспорообразующие грамотрица­тельные анаэробы

Bacteroides fragilis

и другие виды рода Bacteroides

Prevotella melaninogenica

и другие виды рода Prevotella

Porphiromonas spp.

Fusobacterium spp.

Veilonella spp.

Неспорообразующие грамположи­тельные анаэробы

Peptostreptococcus spp. Propionibacterium acnes

Спорообразующие грамположи­тельные анаэробы

Clostridium perfringens Clostridium novyi Clostridium septicum Clostridium histolyticum Clostridium ramosum Clostridium sporogenes Clostridium tetani

Бактерии, перечисленные выше, вызывают гнойно-воспали­тельные процессы различной локализации, в том числе анги­ны, фурункулы, циститы и пиелиты, плевриты, перикардиты, сепсис и др. Многие из этих возбудителей встречаются в нор­мальной микрофлоре человека и проявляют свою патогенность только при нарушении нормальной экологии.

Стафилококки, стрептококки, протей, эшерихии и анаэроб­ные бактерии нередко вызывают смешанную инфекцию как в разнообразных сочетаниях между собой, так и с другими мик­роорганизмами - вирусами, грибами.

Тема 12.1. АЭРОБНЫЕ БАКТЕРИИ -ВОЗБУДИТЕЛИ ГНОЙНО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ И РАНЕВЫХ ИНФЕКЦИЙ

▲ Программа

1. Биологические свойства возбудителей гнойно-воспа­лительной и раневой инфекции, их патогенность, эко­логия, особенности инфекции и эпидемиология вы­зываемых заболеваний.

2. Микробиологическая диагностика.

3. Диагностические препараты, профилактические и ле­чебные препараты.

А Демонстрация

1. Рост а- и р-гемолитических стрептококков на кровя­ном агаре.

2. Рост и образование пигмента P.aeruginosa на агаре.

3. Диагностические и лечебно-профилактические пре­параты.

ЗАНЯТИЕ 1

▲ Задание студентам

1. Микроскопировать и зарисовать мазки из чистых куль­тур возбудителей гнойных инфекций: S.aureus, S.pyo­genes, P.aeruginosa, E.coli, P.vulgaris. Окраска по методу Грама.

2. Микроскопировать и зарисовать мазки из гноя, содер­жащие возбудителей: стафилококков, стрептококков. Окраска по методу Грама.

3. Ознакомиться с питательными средами, применяемы­ми при микробиологической диагностике гнойных и раневых инфекций. Указать назначение отдельных пи­тательных сред.

4. Микробиологическое исследование при раневых и гнойных инфекциях:

а) указать материал, подлежащий исследованию;

б) микроскопический метод: микроскопировать мазок
из гноя, окраска по методу Грама. Сделать вывод;

в) наметить план дальнейшего исследования.

ЗАНЯТИЕ 2

Задание студентам

1. Микробиологическое исследование гноя:

а) учесть результат посева гноя на кровяной агар в
чашке Петри, описать подозрительные колонии,
отметить наличие гемолиза, составить план даль­
нейшего исследования;

б) учесть результаты определения лецитиназы и плаз-
мокоагулазы у выделенной культуры стафилококка.
Сделать вывод;

в) учесть результаты определения чувствительности
культуры стафилококка к антибиотикам. Сделать
вывод.

2. Микробиологическое исследование мочи. Определить количество бактерий в 1 мл мочи по результатам ме­тода секторных посевов. Дать заключение.

3. Серодиагностика ревматизма. Ознакомиться с описа­нием стрептолизиновой реакции. Внести в протокол результаты определения анти-О-стрептолизина в сы­воротке крови больного. Сделать вывод.

4. Дать краткую характеристику демонстрируемым анти­микробным, диагностическим и лечебно-профилакти­ческим препаратам.

Методические указания

Материал для исследования: раневое отделяемое, гной, экс­судат, моча, мазки со слизистых оболочек (носоглотки, зева и др.), кровь при подозрении на сепсис.

Микробиологическая диагностика стафилококковых инфекций МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование (схема 12.1.1). Из иссле­дуемого материала (за исключением крови) готовят мазки для первичной бактериоскопии, окрашивают по методу Грама и микроскопируют. Наличие в препаратах грамположительных кокков, располагающихся в виде гроздевидных скоплений (рис. 12.1.1; на вклейке), позволяет поставить предварительный диагноз стафилококковой инфекции. Следует иметь в виду, что в патологическом материале стрептококки редко образуют ти­пичные скопления, чаще располагаются поодиночке или не­большими группами по 2-3 бактерии.

Бактериологическое исследование. Испытуемый материал засе­вают петлей на чашки с кровяным и желточно-солевым агаром

Рис. 1.4. Культура дрожжей Sac--charomyces cerevisiae при раз­ных методах микроскопии К с. 14. а - микроскопия мазка, окрашен­ного метиленовым синим; б - тем-нопольная микроскопия; в - фазо-во-контрастная микроскопия- г - люминесцентная микроскопия. Ок­раска корифосфином.

Рис.2.2.1. Смесь стафилококков и кишечных палочек. К с. 23. Окраска по методу Грама.

Рис.3.2.1. "Пестрый ряд". К с. 46.

а - ферментация углевода до кислоты и газа; б - отсутствие ферментации;

в - образование индола; г - образование сероводорода.

Рис.6.2. Постановка опыта специфической трансдукции (схема).Я" с. 26

пп™Ь Г i dga " ; б ~ реципиент E - coli 1ас "; в - Рост колоний реципиентного „» рп Т^- ВДо; г *" ^Раженная транслирующим фагом X dgal культура b.coli lac ; д - рост колоний трансдуктантов (красного цвета), несу­щих ген gal, на среде Эндо.

Рис.6.1. Постановка опыта трансформации. К с. 68. контает С пе?™г5 НК " в ™ еленно? из B.subtilis; б - реципиент B.subtilis; в -

селенной с^Л ЫХ ба,СГерИЙ С ДНК; Г ~ рост колоний Рекомбинантов на штамма н L?™ со й С1 Р ептоми «ином; д - отсутствие роста реципиентного 1мма на селективной среде со стрептомицином; е - рост колоний реципиент­ного штамма на среде без стрептомицина.

Рис.6.3. Постановка опыта по конъюгации. К с. 70. а - рост колоний бактерий донора на минимальной среде без стрептомицина; б - рост колоний рекомбинантов на селективной среде со стрептомицином без лейцина; в - рост колоний бактерий реципиентов на полной среде со стрептомицином и лейцином; г - отсутствие роста бактерий донора на среде со стрептомицином; д - донор-культура E.coli F , lei , su 5 ; е - контакт между бактериями донора и реципиента; ж - реципиент-культура E.coli F", lei", st/; з - отсутствие роста бактерий реципиента на селективной среде со стрептомицином без лейцина.

Рис. 12.1.1. Staphylococcus aureus и Streptococcus pyogenes в гное. Окраска по методу Грама. К с. 160.

Рис. 12.2.1. Clostridium perfringens в отечной жидкости. К с. 174.

Рис.19.1.1. Тельца Бабеша -Нег-ри в нейронах гиппокампа. Срез головного мозга человека. К с. 305. Окраска по методу Романовского - Гимзы.

(ЖСА) для получения изолированных колоний. Посевы инку­бируют при 37 °С в течение суток. На следующий день исследуют выросшие колонии на обеих средах. На кровяном агаре отмечают наличие или отсутствие гемолиза (рис. 12.1.2; на вклейке). На ЖСА S.aureus образует золотистые круглые выпуклые непрозрач­ные колонии. Вокруг колоний стафилококков, обладающих ле-цитиназной активностью, образуются зоны помутнения с перла­мутровым оттенком. Для окончательного установления вида ста­филококка 2-3 колонии пересевают в пробирки со скошенным питательным агаром для получения чистых культур с последую­щим определением их дифференциальных признаков (табл. 12.1.1).

Таблица 12.1.1. Дифференциальные признаки стафилококков

Вид

S.aureus

S.sapro-phyticus

S.epider-midis

Образование:

плазмокоагулазы + - -

лецитиназы + - -

альфа-токсина + - -

Ферментация:

глюкозы + + -

маннита в анаэробных условиях + - +

Чувствительность к новобиоцину S S R

Условные обозначения:(+) - наличие признака; (-) - отсутст­вие признака; S - чувствительный; R - резистентный.

Для постановки реакции на плазмокоагулазу плазму крови, разведенную в 2 раза, разливают по 0,4 мл в пробирки, вносят туда по одной петле каждой исследуемой культуры стафило­кокка и помещают в термостат при 37 °С. Через 2, 4 и 24 ч отмечают результаты опыта. При наличии плазмокоагулазы образуется сгусток. В некоторых случаях наряду с плазмокоагу-лазой и лецитиназой определяют фибринолизин, гиалуронидазу, ДНКазу.

Для установления источника внутрибольничной инфекции выделяют чистые культуры стафилококка от больных и бакте­рионосителей, после чего проводят их фаготипирование с по­мощью набора типовых бактериофагов. Фаги разводят до тит­ра, указанного на этикетке. Каждую из исследуемых культур засевают на питательный агар в чашку Петри газоном, высу­шивают, а затем петлей каплю соответствующего фага наносят на квадраты (по числу фагов, входящих в набор), предвари­тельно размеченные карандашом на дне чашки Петри. Посевы инкубируют при 37 "С. Результаты оценивают на следующий день по наличию лизиса культуры (см. рис. 5.3.2).

Определение чувствительности стафилококка к антибиоти­кам - см. тему 7.2.

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования.

Иммунохимические исследования. Основаны на об­наружении антигенов (токсинов и ферментов) возбудителя в материале от больного с помощью чувствительных серологи­ческих реакций.

Биохимические и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, используют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих моле­кул можно поставить предварительный диагноз.

Микробиологическая диагностика стрептококковых инфек­ций (схема 12.1.2)

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование. Мазки для первичной бактериоскопии готовят из патологического материала (за ис­ключением крови), окрашивают по методу Грама и микроско-пируют. При положительном результате обнаруживают цепоч­ки грамположительных кокков (см. рис. 12.1.1). Следует иметь в виду, что в патологическом материале стрептококки редко образуют типичные скопления, чаще располагаются поодиноч­ке или небольшими группами по 2-3 бактерии.

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал за­севают на кровяной агар в чашку Петри. После инкубации при 37 "С в течение 24 ч отмечают характер колоний и наличие вокруг них зон гемолиза. Из части материала, взятого из ко­лоний, готовят мазок, окрашивают по методу Грама и микро-скопируют. Для получения чистой культуры 1-3 подозритель­ные колонии пересевают в пробирки со скошенным кровяным агаром и сахарным бульоном. На кровяном агаре Streptococcus pyogenes образует мелкие, величиной с булавочную головку, мутноватые круглые колонии. В бульоне стрептококк в отличие от стафилококка дает придонно-пристеночный рост в виде хлопьев или зерен, оставляя среду прозрачной.

По характеру гемолиза на кровяном агаре стрептококки делятся на три группы: 1) негемолитические; 2) aj-гемолити­ческие, или зеленящие, образующие зеленоватую зону частич­ного гемолиза; 3) р-гемолитические, образующие вокруг коло­нии полностью прозрачную зону гемолиза.

Заключительным этапом бактериологического исследования является идентификация выделенной культуры по антигенным свойствам (табл. 12.1.2). Серогруппу стрептококков определяют в реакции преципитации с экстрактом из исследуемой культу­ры (полисахаридным преципитиногеном С) и группоспецифи-

ческими сыворотками (обычно 4 наиболее распространенные серогруппы - А, В, С и D). Развернутое серологическое иссле­дование и типирование стрептококков проводят главным об­разом для эпидемиологического обследования.

Таблица 12.1.2. Дифференциальные признаки стрептококков

Вид	Рост при	Рост на средах, содержащих	желчь (40%)
	10"С	45 °С	метиленовый синий (0,1 %)	хлорид натрия (6,5 %)

Забор крови

Забор крови должен осуществляться для определения общего анализа крови, группы крови, проведения проб на совместимость перед переливанием крови, для определения биохимических показателей крови.

Забор крови у больного осуществляется с применением правил асептики и антисептики в процедурной комнате. При этом пациент должен находиться на кушетке в горизонтальном положении.

По своим требованиям процедурная комната отделения должна соответствовать требованиям, предъявляемым к операционной и перевязочной. Следовательно, медицинский персонал должен обязательно придерживаться этих требований и соблюдать правила техники безопасности (работать в перчатках, масках, при необходимости в защитных очках, избегать попадания крови на открытые участки тела, одежду и т.п.).

Профилактика профессиональных заражений медицинских работников проводится в соответствии с правилами, которые сводятся к максимальному предотвращению во время работы возможности аутоинокуляции кровью.

Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью или сывороткой, следует проводить в резиновых перчатках. Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты напальчниками, лейкопластырем. При угрозе разбрызгивания крови или сыворотки следует работать в масках. Запрещается медицинскому персоналу проведение парентеральных процедур с использованием мед инструментария, предназначенного для больных, прием пищи и курение в лабораториях и помещениях, где проводятся процедуры больным.

При проектировании и строительстве новых ЛПУ необходимо предусмотреть наличие в процедурных кабинетах 2 раковин - для мытья рук и для мытья (обработки) медицинского инструментария.

Разборку, мойку и прополаскивание медицинского инструментария, использованных пипеток и лабораторной посуды, приборов и аппаратов, соприкасавшихся с кровью или сывороткой людей, проводить после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.

Следует строго соблюдать правила личной гигиены. После любой процедуры, в том числе и парентерального вмешательства (инъекций, забора крови и т.д.) подводится тщательное двукратное мытье рук в теплой проточной воде с мылом Руки необходимо протирать индивидуальным полотенцем, сменяемым ежедневно, или салфеткой одноразового пользования. При обработке рук следует избегать частого применения дезинфектантов, которые способны вызвать раздражение кожи и дерматиты, что облегчает проникновение возбудителя. Хирургам для мытья рук не следует пользоваться жесткими щетками.

Бланки направлений в лабораторию на исследование категорически запрещается помещать в пробирку с кровью.

В клинико-диагностических лабораториях, исследующих кровь или сыворотки людей, следует работать с соблюдением режима, предусмотренного для работы в микробиологических и вирусологических лабораториях. При работе с кровью, сыворотками или другими материалами нужно пользоваться резиновыми грушами или автоматическими пипетками с одноразовыми наконечниками. Насасывание сыворотки ртом не допускается.

В случае загрязнение рук кровью следует немедленно обработать их тампоном, смоченным дезинфицирующим раствором (1% раствором хлорамина) и вымыть их двукратно теплой проточной водой с мылом, насухо вытереть индивидуальным полотенцем или салфеткой одноразового пользования.

При попадании заразного материала на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают 0,05% раствором марганцовокислого калия, рот и горло дополнительно прополаскивают 70 гр. этиловым спиртом или 0,05% раствором марганцовокислого калия.

При повреждении кожных покровов (проколы, ранения) необходимо выдавить кровь из ранки, предварительно сняв перчатки и поместив их в дезраствор, тщательно вымыть руки в проточной воде с мылом, обработать их 70 гр. этиловым спиртом и затем смазать рану 5% спиртовом раствором йода без применения дезсредств.

Поверхности рабочих столов в конце рабочего дня, а в случае загрязнения кровью немедленно следует обработать 3% раствором хлорамина.

При аварии на работе на центрифуге крышку необходимо открывать медленно и только спустя 40 минут после остановки. Все центрифужные стаканы и разбитое стекло помещают в дезраствор на 2 часа, внутреннюю поверхность дезинфицируют. Обработка центрифуги проводится при отключении прибора из сети.

Все виды использованных пипеток, пробирок, предметные стекла, резиновые груши должны быть обеззаражены погружением в сосуды с дезраствором, а затем подвергнуться предстерилизационной очистке и стерилизации согласно ОСТа 42-21-2-85.

Порядок взятия и транспортировки сывороток крови для исследования

Забор крови производится в количестве 3-5 мл из локтевой вены в стерильную пробирку. Пробирку герметизируют резиновыми пробками и доставляют в лабораторию в течение 3 часов.

При невозможности быстрой доставки крови, кровь центрифугируют при 2-х тыс. оборотов в минуту в течение 3-5 минут или отстаивают в холодильнике при +4 - +6 о С.

Гемолизированная, хилезная, проросшая сыворотка исследованию не подлежит.

Для транспортировки штативы с пробирками помещают в плотно закрывающуюся тару (бикс, банки из-под рентгеновской пленки, специально изготовленные металлические ящики и т.д.), легко подвергающиеся дезинфекции.

Транспортировку материала на большие расстояния осуществляют в условиях холода.

Сыворотку (кровь) в лабораторию доставляет персонал, прошедший специальный инструктаж по технике безопасности. Пробирки с сывороткой маркируют, делая надписи карандашом по стеклу. Не рекомендуется использовать для этой цели этикетки из бумаги и лейкопластыря.

Сопроводительное направление оформляется по форме, утвержденной МЗ, под копирку в двух экземплярах с четким заполнением всех граф. В случае повторного направления сыворотки на исследование на направлении дается четкая пометка «повторно».

Направления помещаются в полиэтиленовые пакеты и доставляются в лаборатории вместе с образцами сывороток.

Лаборатория в обмен выдает стерильные центрифужные пробирки, закрытые резиновыми пробками в штативах лаборатории. Штативы ЛПУ подвергаются в лаборатории дезинфекции и мойке.

Один экземпляр направлений остается в лаборатории, на другом ставится штамп о результате исследования, дате его проведения и подпись врача, проводившего исследования, и возвращается в ЛПУ.

Профилактика профессионального заболевания СПИДом в лечебных учреждениях

1. Лица, подлежащие обследованию на ВИЧ инфекцию: гомосексуалисты, проститутки, бомжи, лица, прибывающие из-за рубежа более чем на 3 месяца.

2. Больные лица, которые подлежат обследованию на ВИЧ инфекцию: длительно лихорадящие, лица с поносами 2-3 недели, резко похудевшие, с заболеваниями крови, с увеличенными лимфоузлами.

3. Правила работы в лаборатории с инфекционным материалом и транспортировкой крови:

3.1. Работать в лаборатории в сменной обуви, в перчатках, масках, очках, двойном халате.

3.2. На рабочем месте не пить, не курить, не есть.

3.3. Иметь аварийную противоспидовскую аптечку: 70% этиловый спирт-50 мл, 50 г марганцевой навески, одноразовые перчатки, одноразовый шприц, пипетки, альбуцид, стерильный материал, жгут, лейкопластырь, маску, йод, нашатырный спирт. Если произошел несчастный случай, следует приготовить 0,05% раствор перманганата калия, для чего взять 100 мл воды и смешать с 50 мг марганцовой навески. Обработать места попадания крови больного на теле медработника.

4. Если в хирургическом отделении медицинская сестра при выполнении инъекций проколола перчатку и уколола палец, то необходимо выполнить следующее: перчатку снять и опустить в 3% р-р хлорамина, руки вымыть 2 раза с мылом, обработать 70% спиртом, йодом, заклеить лейкопластырем, надеть новые перчатки и продолжить работу.

5. При попадании крови больного на белье и мебель в палате или процедурном кабинете последние подлежат обработке всё 3% р-ром хлорамина.

6. Забор крови больного осуществлять в специальную стерильную центрифужную пробирку с резиновой пробкой. Набирать 5 -20 мл крови и хранить в холодильнике не более 3-х суток при температуре 4 градуса. Пробирку поместить в штатив, а штатив в бикс и отправить в лабораторию.

Собирание и подготовка мокроты для исследования

Посуда, в которую собирают мочу для исследования, должна быть абсолютно чистая. Необходимо помнить, что мокрота почти всегда является заразным материалом и поэтому обращаться с ней нужно с осторожностью; не пачкать рук, лишней посуды, окружающих предметов и т.д.Работать необходимо в маске и медицинских перчатках. Особое значение имеет мытье посуды, бывшей в употреблении. Лучше пользоваться посудой, в которой раньше не было мокроты. Посуда, бывшая в употреблении раньше, должна быть простерилизована для того, чтобы убить возбудителя.

Мокроту обычно исследуют макроскопически, микроскопически, и бактериологически. Для исследования лучше всего брать первую утреннюю мокроту, собрав её в чистую баночку без примесей воды и консервирующих средств. Перед взятием мокроты ротовая полость должна быть обработана (чистка зубов, полоскание полости рта).

Собирание мочи

Для обычного анализа достаточно собрать первую утреннюю мочу в количестве 100-200 мл по возможности непосредственно в посуду, которая будет доставлена в лабораторию. В посуде, в которой обычно бывает моча (судна, утки, горшки и т.д), даже после прополаскивания её, образуется осадок их фосфатов, способствующий разложению свежей мочи. Если собрать мочу непосредственно в посуду, в которой она будет отправлена в лабораторию, не удается, желательно для исследования собрать мочу в посуду (банка и др.), где раньше не было мочи, а затем всю порцию в бутылочку. Собирать мочу в посуду, в которой раньше была моча, можно лишь после тщательной механической очистки её (без кислот и щелочей) и многократной промывки водой. Доставлять мочу в лабораторию следует в посуде из бесцветного стекла с плоским дном. Эта посуда должна быть тщательно вымыта. Если исследование не может почему-либо быть произведено вскоре после собирания мочи, то лучше всего сохранять её в холодном месте, но не доводить до замерзания.

Для микро-бактериоскопического исследования мочи на гонококки следует собрать лишь первую утреннюю порцию мочи в количестве 15-20мл. Иногда приходится исследовать утреннюю мочу, собранную в 2-3 порциях отдельно. При этом особенно важно выявление в каждой порции наличие нитей и тщательное микроскопическое, а иногда и бактериоскопическое исследование осадка.

Для бактериологического исследования мочу собирают в стерильную посуду, предварительно обмывают наружные половые органы больного. Для этой же цели, особенно у женщин, моча может быть взята стерильным катетером, не смазанным жиром.

Для количественного определения составных частей мочи необходимо собирать суточное количество её и оттуда брать порции для исследования. В этих случаях следует предотвратить разложение мочи, сохраняя её в холодном месте или добавляя к ней консервирующие химические вещества, не влияющие на результаты исследования (кристаллический тимол или толуол).

Все мероприятия, связанные со сбором мочи медицинский персонал проводит в перчатках, избегая разбрызгивания её и попадания на слизистые оболочки, кожные покровы, медицинскую одежду.

При попадании мочи на кожные покровы и слизистые оболочки последние необходимо промыть водой (с мылом – кожные покровы, ротовую полость –прополоскать с раствором марганцево-кислого калия, в глаза – альбуцид, одежду необходимо сменить.

Собирание кала

Кал для исследования должен быть собран в чистой, сухой и достаточно просторной, по возможности в стеклянной посуде, его не следует класть в баночки с узким горлом. Желательно, чтобы кал был доставлен таким, каким он выделялся. Не следует направлять в лабораторию кал в бумаге, картонных и спичечных коробках и т.п.

Исследование кала желательно производить не позже чем через 8-12 часов после его выделения, т.к. в нём могут произойти изменения под влиянием микробов и ферментов.

Для исследования лучше посылать кал после самостоятельной дефекации. Кал не должен содержать посторонних примесей; мочи, бария, жира, воды.

Посуду с доставленным калом, накрытую бумагой, чашкой Петри или др. после того как наклеен номер или надписана фамилия больного, помещают в вытяжной шкаф или в отдельную хорошо вентилируемую комнату, где производят его осмотр, химические реакции и готовят препараты для микроскопического исследования.

Медицинский персонал работает в медицинских перчатках, избегая попадания частиц кала на открытые участки тела.

Профилактика заражения педикулёзом и сыпным тифом

Действия медицинской сестры:

1 .Надеть дополнительный халат и косынку.

2. Усадить больного на кушетку.

3. Обработать волосы больного одним из растворов:

0,15% р-р карбофоса

0,5% метил ацетофос

р-р Нитефора

водно-мыльной керосиновой эмульсией

4. Накрыть волосы косынкой на 20минут, промыть волосы теплой водой.

5. Ополоснуть волосы 6% раствором столового уксуса.

6. Вычесать частым гребнем волосы в течение 15 минут.

7. Белье больного сложить в мешок и отправить в дезинфекционную камеру.

8. На титульном листе сделать отметку (Р) и сообщить в СЭС.

1. Усадить больного на кушетку, смочить волосы 30% раствором столового уксуса, подогретого до 27С°.

2. Накрыть волосы косынкой на 20минут.

3. Прочесать частым гребнем, промыть волосы и осмотреть.

Тестовые задачи

Назовите ошибку

При поступлении на работу в хирургический стационар обязательно прохождение:

а) вводного инструктажа по безопасным приемам работы

б) первичного инструктажа на рабочем месте

в) медицинского осмотра при поступлении на работу

г) медицинского осмотра не реже 4 раз в год

д) медицинского осмотра не реже 1 раза в год

Выберите правильный ответ

Медперсонал обеспечивается санитарно-гигиенической одеждой согласно:

а) приказа Минздрава РФ № 065 от 1989 г.

б) постановления правительства РФ № 64 от 1993 г.

в) приказа главного врача больницы

г) приказа Минздрава РФ № 130 от 1999 г.

д) все пункты

Выберете правильные ответы (3)

В соответствии с действующими нормами (приказ МЗ № 65) медперсонал обеспечивается:

а) халатами в количестве 4 штук на 24 месяца

б) халатами в количестве 6 штук на 24 месяца

в) шапками медицинскими в количестве 4 штук на 24 месяца

г) шапками медицинскими в количестве 6 штук на 24 месяца

д) обувью профилактической 1 пара на 12 месяцев

е) обувью профилактической 2 пары на 12 месяцев

Найдите ошибку

При работе с антибиотиками соблюдать следующие меры предосторожности:

а) тщательно защищать кожу от прямого контакта

б) мыть руки после каждой манипуляции

в) выпускать воздух из шприца, не вынимая иглы из флакона с антибиотиком

г) одевать 4-х слойную маску и защитные очки при работе с антибиотиками

Назовите правильный ответ

Медпрепараты, относящиеся к сильнодействующим лекарствам, необходимо хранить:

а) в специальном шкафу

б) в холодильнике

г) в сейфе под замком

д) в кабинете старшей медицинской сестры

е) в сейфе с сигнализацией под замком (на внутренней стороне дверцы надпись «А» и «В»)

Выберете правильный ответ

а) мытье рук двумя щетками с мылом в течение 10 минут

б) мытье рук одной щеткой с мылом в течение 5 минут

в) мытье рук одной щеткой с мылом в течение 5 минут + мытье рук в растворе С-4 5 минут

г) мытье рук двумя щетками с мылом в течение 5 минут + мытье рук в растворе С-4 2 минуты

д) мытье рук с мылом + мытье рук в растворе С-4 в течение 1 минуты

Выберете правильный ответ

Хирургическая обработка рук по ускоренному способу заключается:

а) мытье рук двумя щетками с мылом 5 минут

б) мытье рук одной щеткой с мылом 2 минуты

в) мытье рук двумя щетками с мылом 2 минуты + мытье рук хлоргексидином 2 минуты

г) мытье рук с мылом + мытье рук хлоргексидином 2-3 минуты

д) правильны все ответы

Найдите правильный ответ

Медработники обследуются на бактерионосительство:

а) 6 раз в год

б) 4 раз в год

в) 8 раз в год

г) 2 раз в год

д) 1 раз в год

Найдите правильный ответ

Медперсонал проходит медицинский осмотр всеми специалистами:

а) 4 раз в год

б) 6 раз в год

в) 2 раз в год

г) 1 раз в год

Инструкция была разработана для стоматологической поликлиники, но вполне подойдет и для любого другого медицинского учреждения после небольшой корректировки.

1. ОБЩИЕ ТРЕБОВАНИЯ ОХРАНЫ ТРУДА

1.1. К работе допускаются лица, прошедшие предварительный (при поступлении на работу), периодический медицинский осмотр, иммунизацию против вирусного гепатита В, с записью в личной медицинской книжке, вводный инструктаж по охране труда.
На рабочем месте, перед началом работы, и в дальнейшем, 1 раз в 3 месяца, работник проходит инструктаж по охране труда и правилам пользования аптечкой «Анти-СПИД» в аварийных ситуациях, в соответствии с функциональными обязанностями.
1.2. Основной принцип эпидемиологической предосторожности: любой пациент рассматривается как потенциальный источник инфекции.

2. ТРЕБОВАНИЯ ОХРАНЫ ТРУДА ПЕРЕД НАЧАЛОМ РАБОТЫ

2.1. Убедиться в наличии аварийной аптечки «Анти-СПИД»:

• 70% спирт;
• 5% спиртовой раствор йода;
• перевязочный материал;
• бактерицидный пластырь;
• глазные пипетки 2 шт.;
• стерильные ватные шарики и марлевые тампоны.

2.2. Аптечка должна храниться в легко доступном месте в кабинете приема пациентов.
2.3. Работать в средствах индивидуальной защиты, отвечающих санитарно-гигиеническим требованиям: медицинских халатах (костюмах), шапочках, сменной обуви, а при угрозе разбрызгивания крови или другого биоматериала — в масках, защитных очках или экранах.
2.4. Смену одежды в подразделениях хирургического профиля осуществлять ежедневно и по мере загрязнения, терапевтического профиля – 2 раза в неделю и по мере загрязнения. Сменная обувь персонала, работающего в помещениях с асептическим режимом, должна быть из нетканого материала, доступного для дезинфекции.
2.5. Все инвазивные диагностические и лечебные манипуляции проводить в перчатках. Перчатки используются во всех случаях, когда возможен контакт со слизистыми оболочками, поврежденной кожей, с кровью или другими биологическими субстратами, потенциально или явно контаминированными микроорганизмами. Не допускается использование одной и той же пары перчаток при контакте с двумя и более пациентами, при переходе от одного пациента к другому или от контаминированного микроорганизмами участка тела к чистому. После снятия перчаток проводят гигиеническую обработку рук.
2.6. Медицинские работники, имеющие поражения кожи, отстраняется от работы и направляется на обследование и лечение. При наличии на руках микротравм, царапин, ссадин необходимо заклеить поврежденные места лейкопластырем.

3. ТРЕБОВАНИЯ ОХРАНЫ ТРУДА ВО ВРЕМЯ РАБОТЫ

3.1. Необходимо проявлять максимальную осторожность при выполнении манипуляций с колющими и режущими инструментами (иглы, боры, диски и др.); открывая флаконы, ампулы следует избегать проколов и разрывов перчаток, порезов рук.
3.2. Разборку и мойку медицинского инструментария, приборов и аппаратов, соприкасавшихся с кровью, слюной пациентов нужно проводить только в перчатках после предварительной дезинфекции инструментов, приборов, аппаратов.
3.3. Запрещается надевание колпачков на использованные иглы. Острые предметы должны сбрасываться в непрокалываемые контейнеры с дезраствором.
После проведения инъекции (манипуляции) медицинский работник, не накрывая иглу колпачком, набирает в шприц при помощи поршня дезраствор из емкости «для дезинфекции шприцев», затем отсоединяет иглу от шприца с помощью иглосъемника непрокалываемого контейнера. После отсоединения иглы корпус шприца с поршнем помещают в промаркированную емкость с дез. раствором «для дезинфекции шприцев». Выпускать дез. раствор из корпуса шприца с помощью поршня можно только после соответствующей экспозиции.
3.4. Выполнять манипуляции ВИЧ-позитивному пациенту необходимо в присутствии второго специалиста, который может в случае разрыва перчаток или пореза продолжить ее выполнение.
3.6. Использовать двойные перчатки (если это возможно при операции), поскольку это значительно сокращает количество крови, поступающей внутрь при повреждении перчаток.
3.7. Передавать все острые инструменты через лоток, а не из рук в руки, исключить использование пальцев для направления иглы, изменить хирургические приемы с переходом на использование иглодержателей.
3.8. Заполнение медицинской документации должно вестись на чистом столе.
3.9. В ходе проведения манипуляций пациенту персонал не должен вести записи, прикасаться к телефонной трубке и т.п.
3.10. Запрещается принимать пищу, напитки, курить и пользоваться косметикой на рабочем месте.
3.11. Не допускается выход сотрудников в медицинской одежде и обуви за пределы поликлиники.

4. ТРЕБОВАНИЯ ОХРАНЫ ТРУДА В АВАРИЙНЫХ СИТУАЦИЯХ

4.1. В случае порезов и уколов немедленно снять перчатки, вымыть руки с мылом под проточной водой, обработать руки 70% спиртом, смазать ранку 5% спиртовым раствором йода.
4.2. При попадании крови или других биологических жидкостей на кожные покровы это место обрабатывают 70% спиртом, обмывают водой с мылом и повторно обрабатывают 70% спиртом.
4.3. При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на слизистую глаз, носа и рта: ротовую полость промыть большим количеством воды и прополоскать 70% раствором этилового спирта, слизистую оболочку носа и глаза обильно промывают водой (не тереть).
4.4. При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на халат, одежду: снять рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор. Кожа рук и других участков тела под местом загрязненной одежды протирается 70%-ным спиртом, затем промывается с мылом и повторно протирается спиртом; загрязненная обувь двукратно протирается ветошью, смоченной в растворе одного из дезинфицирующих средств.
4.5. О каждом аварийном случае необходимо немедленно сообщить руководителю подразделения, его заместителю или вышестоящему руководителю.
4.6. Травма, полученная медработником, регистрируется в «Акте о несчастном случае на производстве» (3 экз.) и Журнале регистрации несчастных случаев на производстве. В составлении Акта принимает участие комиссия из 3-х человек: зав. отделением, старшая медицинская сестра, инженер по охране труда.
4.7. Провести комплекс мероприятий по предотвращению заражения ВИЧ-инфекцией согласно «Алгоритма действий медицинского персонала при травмах», утвержденного главным врачом Учреждения: обследование на ВИЧ и вирусные гепатиты В и С пациента – потенциального источника заражения и медицинского работника, проведение постконтактной профилактики заражения ВИЧ антиретровирусными препаратами, диспансерное наблюдение пострадавшего медицинского работника в СПИД-центре.

5. ТРЕБОВАНИЯ ОХРАНЫ ТРУДА ПО ОКОНЧАНИИ РАБОТЫ

5.1. Дезинфекцию поверхностей предметов, находящихся в зоне лечения (столик для инструментов, кнопки управления, клавиатура, воздушный пистолет, светильник, плевательница, подголовник и подлокотники стоматологического кресла) проводят после каждого пациента дезинфицирующими средствами широкого спектра антимикробного действия методом двукратного протирания, каждый раз новой ветошью, в случае загрязнения любых поверхностей кровью — дезинфекция проводится немедленно.